1. Правова система ipLex360
  2. Законодавство
  3. Інструкція


МІНІСТЕРСТВО АГРАРНОЇ ПОЛІТИКИ УКРАЇНИ
ЗАТВЕРДЖЕНО
Наказ Міністерства
аграрної політики України
01.06.2004 N 197
( z0738-04 )
Зареєстровано в Міністерстві
юстиції України
16 червня 2004 р.
за N 741/9340
ІНСТРУКЦІЯ
з проведення тестування племінних тварин за ДНК-маркерами
1. Загальні положення
1.1. Ця Інструкція, розроблена на виконання Закону України "Про племінну справу у тваринництві", визначає порядок проведення тестування за ДНК-маркерами у тваринництві, яке є невід'ємною частиною генетичної експертизи походження та аномалій племінних тварин.
1.2. Тестування за ДНК-маркерами - визначення генотипу тварини за окремими генами або локусами геному на основі аналізу ДНК.
Аналіз ДНК - визначення алельного стану локусу. Генотипи можуть визначатися за окремими генами, важливими в біологічному та господарському відношенні, за високополіморфними локусами ДНК та за будь-якими іншими локусами геному сільськогосподарських тварин.
1.3. Мета тестування - виявлення тварин із спадковими вадами розвитку та особливостями генотипу за окремими локусами.
1.4. Тестування за ДНК-маркерами проводять один раз за життя тварини.
1.5. Організацію та проведення відбору зразків біоматеріалу для тестування за ДНК-маркерами здійснюють ветеринарні спеціалісти господарств/власників тварин.
1.6. Тестування за ДНК-маркерами здійснюють на підприємствах (лабораторіях) генетичного контролю атестовані фахівці із спеціальною освітою, які пройшли спеціальну підготовку щодо проведення ДНК-тестування.
2. Визначення термінів
У цій Інструкції наведені нижче терміни вживаються в такому значенні:
алель - одна з альтернативних структурних форм стану гена;
біоптат - частка тканини (органа), отримана прижиттєво для дослідження;
генотип - сукупність генів організму;
ДНК - дезоксирибонуклеїнова кислота, речовина спадковості, молекула, яка кодує генетичну інформацію і здатна до самовідновлення;
ДНК-ампліфікація - множинне копіювання певної ділянки ДНК за допомогою ПЛР;
електрофореграма - результат розділення біополімерів в електричному полі;
електрофорез - фізичний метод розділення біополімерів в електричному полі;
ПЛР - полімеразна ланцюгова реакція;
праймер - коротка послідовність нуклеотидів, яка використовується в ПЛР;
рестрикт - фрагмент ДНК, отриманий у результаті обробки ДНК рестриктазою;
рестриктаза - бактеріальний фермент, що розщеплює молекулу ДНК у специфічних ділянках (сайтах пізнавання);
скринінг - метод або комплекс методів, що дає змогу ідентифікувати окремий об'єкт шляхом перегляду великої кількості об'єктів;
супернатант - надосадова рідина;
BLAD - (Bovine Leucocyte Adhesion Deficiency) синдром дефіциту адгезійності лейкоцитів великої рогатої худоби;
RYR - (rianodine receptor gene, ріанодин-рецепторний ген). Виконує головну роль у контролі стресчутливості свиней.
3. Організація ДНК-тестування
3.1. Як біопробу для тестування за ДНК-маркерами використовують будь-який біологічний матеріал тварини: кров, сперму, біоптат тощо.
3.1.1. Відбір крові
Проводять в антикоагулянт або на марлевий тампон. За умови використання марлевого тампона його просякують відібраною кров'ю та висушують на повітрі. Для ДНК-аналізу достатньо 0,5 мл рідкої крові або кров'яної плями на марлевому тампоні розміром 5х5 мм.
Умови зберігання крові:
рідкої - 5-7 діб при температурі 4 град.С або декілька місяців при температурі -20 град.С;
висушеної - у герметично закритому сухому пакеті до 5 років за кімнатної температури або в холодильнику при температурі 4 град.С. Висушену кров можна пересилати поштою до підприємства (лабораторії) генетичного контролю.
3.1.2. Відбір та зберігання сперми
Відбирають 0,5-2 мл нативної сперми. Сперму для виділення ДНК зберігають за умов, аналогічних для зберігання рідкої крові.
3.1.3. Відбір біоптатів
Біоптати можуть мати різне походження. Для ДНК-аналізу можна використовувати вищипи з вуха, які залишаються при міченні тварин. Термін зберігання шматочків розміром від 5х5 мм при температурі 4 град.С - 3-4 доби, у замороженому стані (-20 град.С і нижче) - необмежений час.
3.1.4. Під час відбору кожну пробу маркують індивідуальним номером. Складають акт про відбір проб у довільній формі, у якому вказують повну назву господарства/власника, де зроблено відбір біоматеріалу, час відбору, його вид, записують номери тварин та відповідні номери проб.
3.2. Виділення ДНК проводять за декількома методиками в залежності від мети дослідження.
За умови, якщо метою дослідження є скринінговий експрес-аналіз певної групи тварин на наявність генетичних аномалій чи особливостей, ДНК виділяють експрес-методом у невеликій кількості, термін зберігання проби 1-2 доби.
З метою зберігання проби тривалий час і використання для ряду аналізів - ДНК виділяють відповідним методом, така ДНК-проба може зберігатися декілька років.
3.3. Методи виділення ДНК
3.3.1. Експрес-метод виділення ДНК з різних тканин за допомогою реагента "Chelex-100".
3.3.1.1. Виділення ДНК із крові:
до 2-500 мкл крові або гомогенізованих тромбів додають 1000 мкл стерильної дистильованої води та перемішують на мікрозмішувачі типу "Vortex";
суміш інкубують протягом 15-30 хв за кімнатної температури, періодично перемішують шляхом струшування;
центрифугують протягом 1 хв при 6000 об/хв;
обережно видаляють надосадову рідину, залишають 20-30 мкл рідини над осадом;
додають 170-180 мкл 5%-ного стерильного водяного розчину "Chelex-100";
інкубують протягом 15-30 хв. при температурі 56 град.С;
ретельно перемішують шляхом струшування та витримують 8 хв. на водяній бані при температурі 100 град.С;
ретельно перемішують шляхом струшування;
центрифугують протягом 5 хв. при 6000 об/хв.
Для ампліфікації використовують 5 мкл надосадової рідини, яка містить ДНК. Зберігають зразки при температурі -20 град.С. Після кожного розморожування зразки перемішують та центрифугують протягом 5 хв. при 6000 об./хв.
3.3.1.2. Виділення ДНК із сперми:
до 3 мкл нативної сперми додають 200 мкл 5% стерильного водного розчину "Chelex-100"
до суміші додають 2 мкл протеїнази К концентрацією 10 мг/мл та 7 мкл 1 М дітіотрейтолу;
обережно перемішують шляхом струшування та інкубують зразки 30-60 хв. при температурі 56 град.С;
перемішують уміст пробірок на мікрозмішувачі 5-10 секунд та інкубують 8 хв. при температурі 100 град.C.;
перемішують на мікрозмішувачі 5-10 секунд та центрифугують 2-5 хв. при 8000-10000 об./хв.
Зразки зберігають при температурі -20 град.С. Для ампліфікації використовують 5 мкл надосадової рідини, яка містить ДНК.
Концентрацію та ступінь очищення ДНК визначають спектрофотометрично (спектрофотометр СФ-46) при довжині хвилі 260 та 280 нанометрів. Нативність ДНК визначають шляхом електрофорезу в 1% агарозному гелі за умови відсутності "шлейфу" фрагментів ДНК та інтенсивності флуоресценції бромистого етидію при ультрафіолетовому опромінюванні електрофореграм.
3.3.2. Метод виділення ДНК за Соколовим-Джемелинським (для проведення ряду аналізів і тривалого зберігання препаратів ДНК):
5 мл крові, що містить антикоагулянт змішують з 30 мл холодного (4 град.С) буферу для лізису клітин (0,32 М сахарози, 5 мМ MgCl2, 1% Тритон Х-100, 0,01М трис-HCl (рН 7,6)) і витримують при температурі 4 град.С протягом 30 хв.;
ядра клітин осаджують шляхом центрифугування при 4000 об/хв. Термін осаджування 30 хв. при температурі 4 град.С;
осад ресуспендують у розчині, що містить 1,5 мл солі ЕДТА (75 мМ NaCl, 25 mM ЕДТА (рН 8,0)), 200 мкл 10% SDS, 25 мкл (10 мг/мл) протеїнази К, та інкубують протягом 16 годин при температурі 37 град.С;
до одержаного лізату додають 0,75 мл 5М ацетату калію (рН 4,8), обережно перемішують, витримують 30 хв при температурі 4 град.С та центрифугують (40 хв., 5000 об./хв., 4 град.С);
до супернатанту додають два об'єми холодного (4 град.С) 96% етанолу та вимотують ДНК на скляну паличку;
підсушують за кімнатної температури, ДНК двічі промивають 70% етанолом та розчиняють у 0,5 мл буферу ТЕ (10 мМ Тріс-HCl (pH 7,4)), 1 мМ ЕДТА (рН 8,0) або 0,5 мл деіонізованої води.
Проби ДНК зберігають при температурі -20 град.С.
3.4. ДНК-ампліфікація локусів геному, вибраних для аналізу
Для ДНК-ампліфікації використовують метод полімеразної ланцюгової реакції (ПЛР). Суть методу - багатократний направлений синтез ДНК із дезоксирибонуклеотидтрифосфатів, in vitro, за допомогою термостабільної ДНК-полімерази. Специфічність синтезу (ампліфікації) вибраної ділянки ДНК визначається синтетичними праймерами-затравками.
3.4.1. Обладнання для проведення ПЛР:
ампліфікатор (інша назва приладу - термоциклер або термостат, що програмується для проведення ампліфікації);
автоматичні мікропіпетки (0,5 - 200 мкл) для відбору зразків;
центрифуга для пробірок типу "Eppendorf" (частота обертання ротора до 14000 об./хв.);
прилади для вертикального (у поліакриламідному гелі) та горизонтального ( в агарозному гелі) електрофорезу;
трансілюмінатор;
система для фото- або цифрової документації результатів.
3.4.2. Реактиви для проведення ПЛР:
термостабільна ДНК-полімераза;
специфічні праймери-затравки;
реакційна суміш для проведення ПЛР (уміщує реакційний буфер для проведення ПЛР з MgCl2 або без нього, оптимізований для конкретної термостабільної ДНК-полімерази, та суміш чотирьох дезоксинуклеотид-трифосфатів);
високоочищена (деіонізована) вода.
Реактиви поставляються у готовому вигляді фірмами-виробниками.
3.4.3. Проведення реакції
В ампліфікаційну пробірку (0,5 мл) уносять компоненти реакції: реакційну суміш, праймери-затравки для синтезу вибраної ділянки ДНК, термостабільну ДНК-полімеразу, зразок ДНК тварини і воду, доводячи до кінцевого об'єму 25 мкл.
Конкретна кількість реактивів (мкл) залежить від концентрації, у якій вони поставляються фірмами-виробниками. Реакційна суміш завжди вміщує 1-кратний реакційний буфер, а кількість у ній іонів Mg ++ може коливатися в діапазоні від 1,5 до 3 мМ. Кількість полімерази, що вноситься, залежить від її активності. Уносять 1-2 одиниці активності фермента (0,1-0,5 мкл). Загальну кількість реактивів розраховують у відповідності до числа зразків, які ампліфікують. Збирають в окрему пробірку всі компоненти реакції, крім зразка ДНК, після ретельного перемішування розносять в окремі пробірки. Пробірки заздалегідь маркують відповідно до зразків ДНК. Для запобігання випаровуванню на реакційну суміш до кожної пробірки наносять шляхом нашаровуванню мінеральне масло.
Для ДНК-діагностики стрес-синдрому у свиней як один з можливих варіантів використовують праймери:
RYR 1: 5' - GTGCCTGATGTCCTGTGTTCCCT - 3';
RYR 2: 5' - CTGGTGACATAGTTGATGAGGTTTG - 3'.
У результаті ПЛР синтезується фрагмент ДНК розміром 134 пари нуклеотидів (п.н.).
Для ДНК-аналізу синдрому дефіциту адгезійності лейкоцитів великої рогатої худоби (BLAD) використовують праймери:
F - 5' - TGAGACCAGGTCAGGCATTGCGTTCA - 3';
R - 5' - CCCCCAGCTTCTTGACGTTGACGAGGTC - 3'.
У результаті ПЛР синтезується фрагмент ДНК розміром 132 п.н.
В ампліфікаційній суміші під час ДНК-тестування великої рогатої худоби за геном гормону росту використовують праймери:
F - 5' - CCGTGTCTATGAGAAGC - 3';
R - 5' - GTTCTTGAGCAGCGCGT - 3'.
У результаті ПЛР синтезується фрагмент ДНК розміром 428 п.н.
Для свиней використовують праймери:
BG3M - 5' - ACCGGCTGTGATGGCTGCAGGCAA - 3';
BG4 - 5' - AGGTACTCCATCCAGAACGCCCAG - 3'.
У результаті ПЛР синтезується фрагмент ДНК розміром 659 п.н.
Під час ДНК-тестування за геном капа-казеїну використовують праймери:
Bocas A: 5' - ATGTGCTGAGCAGGTATCCTAGTTATGG - 3';
Bocas B: 5' - CCAAAAGTAGAGTGCAACAACACTGG - 3'.
У результаті ПЛР синтезується фрагмент ДНК розміром 883 п.н.
Для ампліфікації фрагмента гена рецептора естрогена використовують праймери:

................
Перейти до повного тексту